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Data: 22 luglio 2013

Da: Christal Pollock, DVM, DABVP (Avian Practice)

Parole chiave: tartaruga scatola, orecchio, ipovitaminosi A, organoclorina, otite, metaplasia squamosa, Terrapene, Trachemys, vitamina A

Categorie: Rettili & Anfibi, Tartarughe & Tartarughe, Medicina d’Emergenza

Comprensione dell’orecchio della tartaruga

L’orecchio della tartaruga è una struttura semplice che si trova caudoventrale all’occhio coperto da una grande scaglia chiamata scuto timpanico (McArthur 2004, Murray 2006). Come in molti rettili, l’orecchio esterno è assente nei cheloni. L’orecchio medio consiste in una grande cavità timpanica che è delimitata lateralmente dalla membrana timpanica, che si trova a diretto contatto con la pelle sovrastante (Fig 1). La regione centrale della pelle sovrastante il timpano è relativamente sottile, quindi bisogna fare attenzione a non danneggiare quest’area durante l’immobilizzazione (McArthur 2004). I rettili hanno un solo ossicino, la columella, un osso lungo e sottile che attraversa la cavità timpanica per inserirsi medialmente sulla finestra ovale della coclea. Una stretta tuba di Eustachio collega l’orecchio medio all’orofaringe (Murray 2006)

La membrana timpanica

Figura 1. La membrana timpanica si trova a filo della pelle sotto lo scuto timpanico (freccia) caudoventrale dell’occhio. Immagine di Sid Mosdell. Clicca sull’immagine per ingrandirla.

Cos’è un ascesso auricolare?

Un ascesso auricolare è un tappo caseoso che può svilupparsi lentamente nell’orecchio medio (de la Navarre 2000, Holladay 2001, Brown 2004, Murray 2006). Dal momento che l’eterofilo del rettile manca di proteasi in grado di liquefarsi, i detriti infiammatori appaiono come una massa soda e caseosa (Fig 2).

L'ascesso auditivo è un tappo caseoso ben incapsulato (freccia) che riempie la cavità timpanica

Figura 2. L’ascesso auditivo è un tappo caseoso ben incapsulato (freccia) che riempie la cavità timpanica. Questa tartaruga scatola ornata (Terrapene ornata ornata) in realtà soffriva di ascesso bilaterale. Immagine fornita da Mike Comella di Wichita Falls Reptile Rescue. Clicca sull’immagine per ingrandirla.

Un ascesso auditivo è composto da un centro necrotico con uno strato esterno contenente quantità variabili di cheratina e un marcato e diffuso infiltrato di cellule infiammatorie. Le cellule frequentemente osservate includono eterofili, linfociti e plasmacellule (Brown 2004). Istologicamente l’epitelio timpanico rivela metaplasia squamosa, iperplasia e cheratinizzazione (Holladay 2001, Brown 2004). La vascolarizzazione all’interno del rivestimento della cavità timpanica è da moderatamente a marcatamente iperemica (Brown 2004).

Cosa causa gli ascessi auditivi?

La causa dell’ascesso auditivo non è completamente compresa, ma le tartarughe affette tendono ad avere livelli sierici ed epatici più bassi di vitamina A (Holladay 2001). Si ritiene che l’ipovitaminosi A sia un fattore predisponente perché i retinoidi sono necessari per il normale mantenimento di un epitelio sano (Brown 2004). La carenza di vitamina A porta alla metaplasia squamosa e all’ipercheratinizzazione dell’epitelio che secerne mucina, compreso l’epitelio timpanico. Quando la metaplasia squamosa si sviluppa nell’orecchio medio e nella tuba di Eustachio, l’epitelio scorificato può accumularsi per formare un tappo caseoso (Brown 2004). L’infezione secondaria è generalmente associata alla crescita eccessiva di batteri opportunistici che hanno origine nell’orofaringe e risalgono la tuba di Eustachio (Kirchgessner 2009, Stahl 2013).

Nelle tartarughe in cattività, la carenza di vitamina A è comunemente associata ad un cattivo allevamento, in particolare alla carenza di vitamina A alimentare (Brown 2004, Murray 2006, Joyner 2006). La temperatura subottimale e/o l’ingestione di acqua contaminata possono anche promuovere lo sviluppo di un’infezione batterica secondaria (Murray 2006).

La causa dell’ascesso aurale è sconosciuta nelle tartarughe in libertà, tuttavia si ritiene che i contaminanti ambientali chimici sintetici abbiano un ruolo (Joyner 2006). Una maggiore esposizione ai composti organoclorurati può alterare l’omeostasi della vitamina A negli uccelli e nei mammiferi (Poon 1995, Holladay 2001, Sleeman 2008). I rettili possono mostrare una sensibilità simile a questi composti, che possono accumularsi nel corpo dei rettili a livelli uguali o superiori a quelli riportati in altre specie (Sleeman 2008). Alti livelli di organoclorurati sono stati associati a metaplasia squamosa e ascesso auricolare in tartarughe selvatiche (Terrapene carolina) (Holladay 2001), ma non è chiaro se esista una relazione causale (Kroenlein 2008, Sleeman 2008).

Un’altra potenziale ma rara causa di ipovitaminosi A includerebbe qualsiasi condizione che causa maldigestione e malassorbimento in quanto ciò interferirebbe con l’assorbimento gastrointestinale della vitamina A (Brown 2004).

Diagnosi differenziale

La diagnosi clinica di un ascesso auricolare è solitamente chiara, tuttavia un gonfiore mediale alla membrana timpanica può anche essere causato da (Kirchgessner 2009, Joyner 2006, Stahl 2013):

  • Ematoma
  • Micobatteriosi
  • Parassiti sottocutanei (protozoi, cestodi, nematodi)
  • Cisti sebacee

Segnalazione

Gli ascessi auditivi sono problemi di salute comuni sia nelle tartarughe di scatola in libertà che in cattività (Brown 2002, Brown 2003, Murray 2006, Joyner 2006, Sleeman 2008, Stahl 2013) e nelle tartarughe acquatiche o semiquatiche, in particolare nei ragni dalle orecchie rosse (Trachemys scripta elegans) (Kirchgessner 2009, Stahl 2013). In due indagini separate sulle tartarughe orientali che vivono libere, ammesse ai centri di riabilitazione della fauna selvatica, l’ascesso auricolare è stata la seconda categoria diagnostica più comune dopo il trauma (Brown 2002, Brown 2003, Schrader 2010).

Mentre la malattia è possibile in tutte le età, i problemi clinici sono più comunemente osservati negli adulti. Infatti il sacco vitellino, che non è completamente riassorbito fino a circa 6 mesi di età, generalmente fornisce adeguati livelli di vitamina A alle giovani tartarughe (Kirchgessner 2009).

Storia

Il principale disturbo presentato dalla tartaruga con un ascesso auricolare è spesso il gonfiore sulla testa. I proprietari di tartarughe in cattività possono anche riferire una storia di anoressia (Stahl 2013).

Fate domande specifiche, ma non tendenziose, sull’allevamento della tartaruga (Murray 2006, Kirchgessner 2009):

  • Quali fonti di vitamina A o beta-carotenoidi ci sono nella dieta?
  • Qual è la fonte d’acqua?
  • Qual è la frequenza dei cambi d’acqua e della disinfezione della ciotola dell’acqua?

Risultati dell’esame fisico

  • Si osserva una massa da semi-rigida a ferma sotto il timpano (Murray 2006).
  • La tumefazione può apparire leggermente gialla a causa del materiale caseoso all’interno della cavità timpanica (Murray 2006).
  • La tumefazione può essere unilaterale o bilaterale e può variare notevolmente in dimensioni (Brown 2003, Murray 2006, Joyner 2006).
  • Si osserva talvolta un’inclinazione della testa (Stahl 2013), presumibilmente dovuta al dolore.
  • Fare attenzione quando si palpa il gonfiore perché la pressione può esprimere detriti attraverso la tuba di Eustachio nell’orofaringe (Murray 2006, Kirchgessner 2009).
  • Si possono anche osservare risultati concomitanti causati da ipovitaminosi A, ma non collegati all’ascesso auricolare.

Segni potenziali di ipovitaminosi A che possono essere osservati nei cheloni in aggiunta all’ascesso auditivo (Kirchgessner 2009)

  • Blepharedema, blefarospasmo
  • Congiuntivite
  • Cecità (evidenza di)
  • Rinite
  • Malattia delle vie respiratorie inferiori (che si manifesta con scolo nasale, depressione, dispnea)
  • Pelle anormalmente spessa o sottile, pelle che si sfalda o si copre di vesciche

Punti chiave delle cure urgenti

Molte tartarughe che presentano un ascesso auricolare sono debilitate e beneficeranno di un ritardo nell’intervento chirurgico (de la Navarre 2000, Murray 2006, Kirchgessner 2009, Stahl 2013):

  • Riscaldare il paziente all’estremità superiore della sua zona di temperatura ottimale preferita.
  • Correggere gli squilibri di liquidi ed elettroliti.
  • Fornire supporto nutrizionale.
  • Iniziare antibiotici sistemici ad ampio spettro in pazienti con evidenza di malattia sistemica basata su esame fisico e risultati ematologici (Murray 2006).
  • Fornire analgesia come butorfanolo (0,4-1,0 mg/kg SC, IM) (Schumacher 1996). Assicurarsi che il paziente sia ben idratato prima di istituire una terapia antinfiammatoria come il meloxicam (0,5 mg/kg PO, IM) (Rojos-Solís 2009).
  • Una singola iniezione di vitamina A può anche essere considerata appropriata in casi selezionati (vedi sotto).

Le cure di supporto possono diminuire la risposta infiammatoria locale, che a sua volta può ridurre il sanguinamento intraoperatorio. Programmare la chirurgia (vedi sotto) quando la mentalità, l’atteggiamento e lo stato di idratazione della tartaruga sono migliorati (de la Navarre 2000).

Diagnosi

La diagnosi clinica è basata sull’osservazione di un gonfiore mediale alla membrana timpanica e confermata dall’esposizione chirurgica di materiale caseoso all’interno dell’orecchio (Brown 2003, Joyner 2006, Kirchgessner 2009). Ulteriori test sono talvolta indicati per determinare il miglior piano di trattamento così come la prognosi (Murray 2006):

    • Cultura aerobica/anaerobica e test di sensibilità

La coltura è un valido strumento diagnostico perché non esiste un unico agente batterico responsabile dell’ascesso auricolare nelle tartarughe. I batteri aerobi Gram-negativi sono più comunemente implicati, tuttavia questi organismi tendono ad avere sensibilità antibiotiche imprevedibili. Batteri Gram-positivi e anaerobi sono stati riportati anche negli ascessi auditivi (Brown 2004, Joyner 2006).

Gli agenti batterici riportati negli ascessi auditivi delle tartarughe (Joyner 2006, Murray 2006, Stahl 2013)

      • Aeromonas
      • Citrobacter
      • Escherichia
      • Klebsiella
      • Morganella*
      • Proteus
      • Providencia
      • Pseudomonas
      • Salmonella
      • Corynebacteria
      • Staphylococcus epidermidis
      • Streptococcus spp.
      • Bacteroides
      • Clostridium
      • Fusobacterium

*In uno studio di valutazione delle tartarughe box orientali (Terrapene carolina) in libertà con ascessi auditivi, solo Morganella morganii è stata isolata dalla cavità timpanica di più tartarughe (Joyner 2006).

Anche se Mycoplasma agassizii è stato associato a malattie del tratto respiratorio nei cheloni, non è stata identificata alcuna correlazione tra la presenza di Mycoplasma sp. nelle tartarughe box orientali in libertà e ascessi auditivi (Feldman 2004, Joyner 2006).

L’aspirazione con ago è tipicamente non diagnostica, quindi i campioni di coltura dovrebbero essere raccolti intraoperativamente (Murray 2006, Stahl 2013).

    • Citologia

I risultati della coltura sono a volte negativi, quindi utilizzare la citologia per farsi un’idea dei batteri coinvolti e per esaminare il paziente per agenti eziologici insoliti come Mycobacterium spp. Come i campioni di coltura, i campioni citologici devono essere raccolti chirurgicamente e non tramite aspirazione con ago sottile (Murray 2006, Stahl 2013). Potenziali tecniche di colorazione da eseguire includono la colorazione Romanowski (es. Diff-Quick) e la colorazione acido-resistente, strisci diretti e/o strisci da impronta (Stahl 2013).

    • L’emocromo

L’emocromo completo può talvolta essere usato per trovare prove di malattie sistemiche come leucocitosi, monocitosi, azurofilia, e/o spostamento tossico (Murray 2006, Stahl 2013). Usare cautela quando si interpretano i risultati di laboratorio, in quanto i valori ematologici nei rettili possono essere influenzati da una serie di fattori tra cui età, sesso, ambiente, stagione e stato nutrizionale (Campbell 2006, Schrader 2010).

La carenza di vitamina A può portare alla lipidosi epatica, e un pannello biochimico può talvolta rilevare il coinvolgimento degli organi correlati (Campbell 2006, Kirchgessner 2009).

    • Imaging

Le infezioni ossee possono influenzare negativamente la prognosi. Usare le radiografie di indagine per cercare prove di osteomielite che coinvolgono le ossa adiacenti all’orecchio medio, come l’osso quadrato. L’imaging è anche occasionalmente usato per differenziare l’infiammazione dalla neoplasia (McKlveen 2000, McArthur 2004, Stahl 2013).

    • Istopatologia

Sottoporre un campione bioptico per la valutazione istologica quando una diagnosi di ascesso auricolare è in discussione.

Terapia

    • Educazione del cliente

Mentre la tartaruga è ricoverata, i proprietari dovrebbero prendere misure per migliorare qualsiasi carenza nell’allevamento, incluso il gradiente di temperatura, le pratiche di igiene dell’acqua e l’alimentazione. Dovrebbero essere offerti cibi ricchi di beta-carotenoidi come verdure arancioni e gialle o verdi a foglia scura (Murray 2006, Stahl 2013). Alcuni medici raccomandano di somministrare una piccola quantità di fegato di pollo una volta alla settimana alle tartarughe acquatiche (Kirchgessner 2009), tuttavia esiste il rischio di esposizione alla Salmonella spp. che è potenzialmente patogena per le tartarughe (van Duijkeren 2002).

    • Gestione chirurgica

Il trattamento di un ascesso auricolare richiede la rimozione chirurgica dell’intera massa ben incapsulata in anestesia generale o locale (Kirchgessner 2009, Stahl 2013). Alcuni clinici preferiscono il propofol (10 mg/kg IV in bolo lento) perché la procedura è relativamente breve (de Navarre 2000, Murray 2006). Medetomidina-ketamina è un’altra combinazione popolare. Un regime raccomandato nei ragni dalle orecchie rosse è la medetomidina (0.2 mg/kg IM) con ketamina (10 mg/kg IM), invertita con atipamizolo (1.0 mg/kg IM) (Greer 2001).

Intubare la tartaruga quando possibile per minimizzare il rischio di aspirazione (Kirchgessner 2009). Se per qualche motivo l’intubazione non è possibile, controllare frequentemente la cavità orofaringea per verificare la presenza di detriti caseosi (Murray 2006). Eseguire una preparazione chirurgica sterile dell’area, in particolare quando verrà raccolto un campione di coltura (de la Navarre 2000, Murray 2006). Fare attenzione a proteggere gli occhi durante la preparazione del sito chirurgico (McArthur 2004).

Sono stati descritti diversi approcci chirurgici, tuttavia una tecnica popolare prevede la creazione di un’incisione orizzontale a tutto spessore attraverso il timpano da ore 9 a ore 3. Estendere l’incisione lungo il bordo ventrale dell’orecchio per creare un’apertura a forma di C. Rimuovere con cura i detriti utilizzando piccoli anelli auricolari, curette o pinze evitando la columella (de la Navarre 2000, Murray 2006). Rimuovere completamente tutto il materiale caseoso, preferibilmente in un unico grande pezzo, anche se non tutti gli ascessi sono incapsulati (Fig 3) (de la Navarre 2000, McArthur 2004). L’emorragia è generalmente limitata e facilmente controllabile con pressione o cauterizzazione leggera (McArthur 2004).Una volta fatto, esaminare attentamente l’intera regione poiché i detriti possono estendersi abbastanza lontano anche nelle regioni più caudali della cavità timpanica (de la Navarre 2000).

Rimuovere l'intero tappo caseoso quando possibile

Figura 3. Rimuovere l’intero tappo caseoso in toto (freccia) quando possibile. Immagine di Mike Comella di Wichita Falls Reptile Rescue. Clicca sull’immagine per ingrandirla.

Raccogliere campioni per la coltura e la citologia, poi lavare la cavità timpanica con abbondanti quantità di soluzione antisettica calda e diluita (ad esempio 1 parte di clorexidina per 30 parti di acqua sterile) (Murray 2006, Kirchgessner 2009, Stahl 2013). Durante il lavaggio, dirigere la testa della tartaruga in modo che le narici siano ventrali rispetto alle orecchie in modo che qualsiasi detrito e liquido che entra nell’orofaringe esca dalla bocca (de la Navarre 2000). Sempre nella tartaruga intubata, passare una piccola cannula irrigante e lavare la tuba di Eustachio con della soluzione fisiologica. Posizionare una garza inumidita o un tampone nella faringe caudale per ridurre il rischio di aspirazione (McArthur 2004).

Dopo il lavaggio, impacchettare la ferita con una pomata antibiotica come la gentamicina oftalmica o una crema di sulfadiazina d’argento (Silvadene, Monarch Pharmaceuticals) (Murray 2006). Continuare il trattamento locale della ferita per circa 1 settimana dopo l’intervento prima di permettere la chiusura della ferita per seconda intenzione (de la Navarre 2000, Murray 2006, Stahl 2013).

    • Gestione medica

Sono spesso indicati antibiotici sistemici; regolare la terapia in base ai risultati della sensibilità (Kirchgessner 2009, Stahl 2013). Continuare l’analgesia e/o la terapia antinfiammatoria secondo necessità.

Resistere all’impulso di iniettare la vitamina A a tutte le tartarughe che soffrono di ascesso auricolare, poiché l’ipervitaminosi può verificarsi anche con una sola iniezione parenterale. Usare con cautela la vitamina A iniettabile solo in casi selezionati, come i pazienti con malattie gravi e/o problemi oculari secondari causati dalla carenza di vitamina A. Selezionare un integratore iniettabile a base di olio e somministrare una singola iniezione (1000-2000 UI/kg IM) seguita da un’integrazione orale e da fonti alimentari di beta-carotene (Kirchgessner 2009). Se il paziente deve essere alimentato con il tubo, aggiungere un integratore orale alla formula.

Piccole dimensioni del paziente significa che la vitamina A iniettabile deve essere spesso diluita. Quando possibile, usare un farmacista per creare una diluizione sicura e accurata. Se le diluizioni vengono create internamente, utilizzare glicole propilenico invece di soluzione fisiologica o acqua sterile poiché la vitamina A è liposolubile (Kirchgessner 2009).

Follow-up

Per assicurarsi che l’infezione sia scomparsa, ricontrollare i pazienti circa 5-7 giorni dopo l’intervento prima che il sito chirurgico si richiuda (Fig 4). Se è stata identificata un’osteomielite attiva, possono essere indicate valutazioni più frequenti con radiografie di controllo per valutare i progressi del paziente (Stahl 2013).

 Rivalutare la tartaruga prima che lo stoma guarisca completamente

Figura 4. Rivalutare la tartaruga prima che lo stoma (freccia) guarisca completamente. Immagine di Mike Comella del Wichita Falls Reptile Rescue. Clicca sull’immagine per ingrandirla.

Prognosi

La maggior parte delle tartarughe con ascesso auricolare risponde bene al trattamento chirurgico e guarisce completamente (de la Navarre 2000, Schrader 2010). A seconda della gravità della malattia, tutti i segni clinici legati all’ipovitaminosi A generalmente si risolvono entro 2-6 settimane (de la Navarre 2000).

La malattia può ripresentarsi quando la carenza di vitamina A non viene affrontata, il granuloma non viene completamente rimosso, o quando è presente un’infezione ossea. Infatti i pazienti con osteomielite sottostante tendono a soffrire di una prognosi più cauta o addirittura scarsa (de la Navarre 2000, Murray 2006, Stahl 2013).

Non è chiaro come l’udito sia influenzato dal granuloma e dallo sbrigliamento chirurgico, tuttavia i cheloni non sembrano soffrire di effetti negativi a lungo termine (de la Navarre 2000, Murray 2006). I cheloni sono in grado di sentire solo i toni bassi e le orecchie possono essere più importanti per l’equilibrio (McArthur 2004).

Brown JD, Richards JM, Robertson J, et al. Pathology of aural abscesses in free-living Eastern box turtles (Terrapene carolina carolina). J Wildl Dis 40(4):704-712, 2004.

Brown JD, Sleeman JM. Morbosità e mortalità dei rettili ammessi al Wildlife Center of Virginia, dal 1991 al 2000. J Wildl Dis 38(4):699-705, 2002.

Brown JD, Sleeman JM, Elvinger F. Determinanti epidemiologici dell’ascesso aurale nelle tartarughe di scatola orientali che vivono libere (Terrapene carolina). J Wildl Dis 39(4):918-921, 2003.

Campbell TW. Patologia clinica dei rettili. In: Mader DR (ed). Reptile Medicine and Surgery, 2nd ed. St. Louis, MO:Saunders Elsevier; 2006:453-470.

de la Navarre BJS. Diagnosi e trattamento degli ascessi aurali nelle tartarughe. Proc Assoc Reptilian and Amphibian Vet 2000:9-13.

Feldman SH, Wimsatt J, Marchang RE, et al. Un nuovo micoplasma rilevato in associazione con la sindrome della malattia respiratoria superiore nelle tartarughe di scatola orientale in libertà (Terrapene carolina carolina) in Virginia. J Wildl Dis 42():279-289, 2004.

Greer LL, Jenne KJ, Diggs JE. Medetomidina-ketamina anestesia in tartarughe cursore dalle orecchie rosse (Trachemys scripta elegans). Contemp Top Lab Anim Sci 40(3):9-11, 2001.

Holladay SD, Wolf JC, Smith SA, et al. Aural abscesses in wild-caught box turtles (Terrapene carolina): Possibile ruolo dell’ipovitaminosi A indotta da organoclorine. Ecotoxicology and Environmental Safety 48(1):99-106, 2001.

Joyner PH, Brown JD, Holladay S, Sleeman JW. Caratterizzazione della microflora batterica della cavità timpanica delle tartarughe di scatola orientali con e senza ascessi auditivi. J Wildl Dis 42(4):859-864, 2006.

Kirchgessner M, Mitchell MA. Cheloni. In: MA Mitchell, TN Tully (eds). Manuale di pratica degli animali esotici. St. Louis: Saunders Elsevier; 2009:233, 242.

Kroenlein KR, Sleeman JM, Holladay SD, et al. Incapacità di indurre la metaplasia squamosa timpanica utilizzando composti organoclorurati in vitamina A-carenza di red-eared sliders (Trachemys scripta elegans). J Wildl Dis 44(3):664-669, 2008.

McArthur S, Wilkinson R, Meyer J. Medicina e chirurgia di tartarughe e tartarughe. Oxford : Blackwell; 2004:46, 319-323, 413-414.

McKlveen TL, Jones JC, Holladay SD. Diagnosi radiografica: ascesso aurale in una tartaruga di scatola. Vet Rad Ultrasound 41(5):419-421, 2000.

Murray MJ. Ascessi auditivi. In: Mader DR (ed). Reptile Medicine and Surgery, 2nd ed. St. Louis: Saunders Elsevier; 2006:742-746.

Poon R, Lecavalier P, Chan P, Viau C. Subchronic toxicity of medium-chained chlorinated paraffin in rat. J Applied Toxicology 15:455-463, 1995.

Rojos-Solís C, Ros-Rodriguez JM, Vallis M. Farmacocinetica di meloxicam (Metacam) dopo somministrazione endovenosa, intramuscolare e orale in tartarughe cursore dalle orecchie rosse (Trachemys scripta elegans). Proc Conf Am Assoc Zoo Vet 2009:288.

Schrader GM, Allender MC, Odoi A. Diagnosi, trattamento e risultati delle tartarughe di scatola orientale (Terrapene carolina carolina) presentate a una clinica della fauna selvatica in Tennessee, USA, 1995-2007. J Wildl Dis 46(4):1079-1085, 2010.

Schumacher J. Rettili e anfibi. In: Thurman JC, Tanquili WJ, Benson GJ (eds). Lumb and Jones’ Veterinary Anesthesia, 3rd ed. Baltimore, MD:Williams & Wilkins; 1996:670-685.

Sleeman JM, Brown J, Steffen D, et al. Relationships among aural abscesses, organochlorine compounds, and vitamin A in free-ranging Eastern box turtles (Terrapene carolina). J Wildl Dis 44(4):922-929, 2008.

Stahl S. Ascessi. In: Mayer J, Donnelly TM (eds). Consulente veterinario clinico: Uccelli e animali esotici. St. Louis, MO: Elsevier Saunders: Editore; 2013. Pp. 71-74.

van Duijkeren E, Wannet WJB, Houwers DJ, van Pelt W. Serotype and phage type distribution of salmonella strains isolated from humans, cattle, pigs, and chickens in the Netherlands from 1984 to 2001. J Clin Microbiol 40(11):3980-3985, 2002.

Altra lettura

McKlveen TL, Jones JC, Holladay SD. Diagnosi radiografica: ascesso aurale in una tartaruga di scatola. Vet Rad Ultrasound 41(5):419-421, 2000.

Per citare questa pagina:

Pollock C. Presentando problema: ascesso Aural in tartarughe. 22 luglio 2013. Sito web LafeberVet. Disponibile a https://lafeber.com/vet/presenting-problem-aural-abscess-in-turtles/